隨著載人航天事業的發展，空間站的建立，月球計劃、火星計劃等逐步推進，航天員在空間環境中的時間日益延長, 但是否能順利適應太空環境仍是目前面臨的一個重要問題，因此解決外太空微重力環境、空間輻射及密閉空間等導致機體發生的一系列問題顯得尤為重要。
研究空間環境尤其是微重力對生物穩態的維持、發育、修復、免疫和骨骼等的影響，防止由于失重引起機體免疫功能改變、感染、骨質丟失、感覺-運動適應及心血管病變等，對尋求載人航天“人系統風險"的對抗措施具有重要意義。作為構建機體的基本單位，研究空間環境對細胞的影響有助于深入理解空間環境影響機體的機制，故空間細胞生物學成為空間生命科學前沿的學科之一。
目前，微重力領域的研究多集中于細胞、組織等對微重力的感知變化，微重力下細胞適應性改變的原理，以及引起改變的分子機制和信號網絡。同時，利用微重力對細胞進行三維培養和組織構建已被廣泛應用于組織工程。現就微重力條件下細胞發生的改變予以綜述，為預防和治療在微重力條件下產生的相關病理變化提供依據，也為更好地利用微重力環境提供理論參考。
01 微重力環境
微重力環境是指機體能感受到的表觀重量遠小于實際重量的環境。在這種環境下，宇航員的四肢感受不到重量，所以能脫離地心引力做出許多在地球上難以完成的動作。然而，重力的改變會導致宇航員機體各系統生理功能的調節發生紊亂，從而引起生理及病理方面的適應性改變，較為明顯的癥狀是有的宇航員飛行結束后的一段時間內血壓會大幅度改變，骨組織嚴重鈣流失，機體肌肉含量減少，易被病毒、細菌等感染。
研究微重力的作用需要拋物線飛行飛機、探空火箭以及空間站等實驗平臺，但空間飛行資源的稀缺制約了研究的開展，故研究者們不得不大量采用地基模擬方法，根據不同的物理學原理開發多種模擬微重力的實驗裝置。
模擬微重力的原理是通過支持物的回轉使位于其上的細胞感受隨機的重力矢量（即平均單位時間的重力矢量之和），而重力矢量方向的不停改變，使細胞每時每刻均感受著方向不斷變化的力量。因此可以認為，細胞受到的力量的矢量之和為０，與失重效應相似。目前，模擬微重力常用的儀器有3D-回轉系統和旋轉壁式回旋系統。
02 微重力對內皮細胞的影響
宇航員的心血管系統在微重力環境下會引發功能障礙，產生機體立位耐力不良，即飛行結束后的一段時間內，宇航員直立身體就會出現血壓下降、心跳過速等癥狀。
1961年５月至1963年５月，美國共發射了６艘“水星號"飛船。其中，飛行時間最長的達34.33ｈ。此后不久，就有文獻對航天飛行后宇航員發生的立位耐力不良進行了報道。有研究證實，宇航員在航空飛行后發生立位耐力不良的概率可高達64％。
內皮細胞是心血管系統重要的重力與壓力感受器，它對重力及壓力具有較強的感知功能，能根據環境的變化改變自身的分泌、代謝能力，而這些變化是導致心血管系統發生紊亂的重要原因。
Infanger等利用回旋發生裝置模擬微重力條件，培養離體內皮細胞，約4ｈ后觀察到細胞出現凋亡樣形態，且重力的改變導致細胞外基質蛋白與胎肝激酶１(fetal liver kinase-1, FLK-1) 的表達增加。隨后的研究發現在微重力環境中，內皮細胞分泌的蛋白至少有６種的分泌量產生大變化，其中包括在細胞骨架重排中扮演重要角色的凝溶膠蛋白和α微管蛋白。
微重力條件培育人臍靜脈融合細胞和人微血管內皮細胞，兩種細胞均由二維變成了三維生長，且實驗進行檢測的蛋白酶體中有26種表達下調，只有一種蛋白酶體的表達發生瞬時性上調。另外，將人臍靜脈內皮細胞置于模擬的微重力中進行培養，24ｈ后與普通環境下培養的人臍靜脈內皮細胞進行對比，發現微重力組的血管生成能力、遷移能力均增強。
03 微重力對骨細胞的影響
微重力條件下，成骨細胞的壽命縮短，而破骨細胞的活性增強，兩者的協同作用導致大量骨質流失，以致宇航員在執行飛行任務時極易引起骨質疏松。研究證實，微重力會使成骨細胞的增殖受到抑制。在微重力條件下，miR-103通過調節Ｌ型電壓敏感通道中的鈣通道來抑制成骨細胞的增殖。同時，微重力還能阻斷G2/M期，從而抑制細胞增殖。成骨細胞不僅增殖會受到抑制，而且其分化也會受影響。Hu等證實，微重力能通過誘導信使RNA-132-3P的上調來抑制成骨細胞的分化。
另有學者發現，在微重力環境下，細胞骨架、細胞外基質、細胞因子及其受體和絲裂原活化蛋白激酶均會發生改變，它們相互協作共同抑制了成骨細胞的分化。
這些變化的機制目前尚不清楚，可能與細胞的轉錄因子有關。核心結合因子a1 (core binding factor al, Cbfa1)是成骨細胞的特異性轉錄因子，它在間充質干細胞向成骨細胞分化的過程中扮演重要角色。人間充質干細胞對應力敏感，在失重的環境下易發生形態、增殖、基因表達和功能方面的改變。
在微重力條件下培養人間充質干細胞，結果發現轉錄因子Cbfa1的表達水平有所下降，而骨形成拮抗因子同源盒蛋白 (homeobox protein, HOX) A2能被Cbfa1抑制，即Cbfa1的表達水平下降，HOX-A2的表達水平上升，故人間充質干細胞向成骨細胞的分化能力降低，這與文獻報道結果一致。
此外，微重力條件下成骨細胞中胰島素樣生長因子１的信使RNA表達會減弱。而胰島素樣生長因子１能刺激骨膠原和骨基質的生成，因此成骨細胞骨形成和骨礦化的能力也受到影響。
早期微重力環境下宇航員發生骨質疏松這一癥狀的研究者，大多將目光集中于微重力對成骨細胞的影響，而忽略了破骨細胞在其中的作用，甚至有研究者稱破骨細胞幾乎不受微重力的影響。但隨著研究的逐漸深入，很多研究者均在微重力環境下觀察到由破骨細胞活性增強而引起的骨吸收窩陷，證實破骨細胞在宇航員發生骨質疏松這一病理癥狀中也發揮重要作用。
另有研究證實，在微重力條件下小鼠骨髓細胞中前破骨細胞及成熟破骨細胞的數量均增多，且骨髓細胞中自噬蛋白５的含量是正常重力條件下培養的８倍以上。故推測，自噬蛋白的增加可能是導致骨髓細胞向破骨細胞分化的重要原因。
04 微重力對軟骨細胞的影響
在微重力條件下培養人類軟骨細胞，30min即可發現細胞內β肌動蛋白、轉化生長因子β1骨橋蛋白、β微管蛋白、波形蛋白的表達增加，它們影響著細胞的結構、增殖、分化和凋亡，以及細胞骨架的形成。
實驗證實，軟骨細胞在微重力條件下首先進行了細胞骨架的重排，隨后才逐步適應微重力條件，從而形成三維聚集體。此外，微重力對軟骨細胞的形成過程也有影響。
在微重力與普通重力條件下，分別使用相同的誘導因子對間充質干細胞向軟骨細胞進行誘導，結果發現微重力組的Ⅱ型膠原蛋白及聚集蛋白聚糖的信使RNA和蛋白質均明顯高于普通重力組誘導的間充質干細胞，而Ⅱ型膠原蛋白及聚集蛋白聚糖是軟骨細胞的標志蛋白，這表明在微重力環境下，間充質干細胞向軟骨細胞分化的能力更強。
劉鵬程等利用旋轉微重力培養系統培養兔的骨髓間充質干細胞，結果發現微重力能誘導印度刺猬蛋白 (Indian hedgehog, IHH) 基因的高表達，它能有效促進軟骨細胞的生成，同時還能抑制軟骨細胞的老化和延緩軟骨細胞向成骨細胞發展的速度。
05 微重力對肌肉細胞的影響
當宇航員在微環境中暴露超過１周時，其肌肉的體積縮小，脂肪酸的利用率明顯降低。肌肉產生這些變化是因為肌肉細胞中的蛋白質分解增加，而合成降低。
實驗發現，在微重力條件下肌肉形成的早期階段，小鼠成肌細胞的增殖明顯受到抑制；成肌細胞在微重力下進行分裂時不僅G2期明顯縮短，且瞬時受體電位通道１和胰島素樣生長因子１異構體的表達也減少，其中瞬時受體電位通道１的減少會引起轉錄下游鈣水平降低，鈣水平的下降使鈣調蛋白的活性降低，鈣調蛋白激酶Ⅱ表達減少，而鈣調蛋白激酶Ⅱ是激活細胞從G2期轉變成Ｍ期的必要激酶。
06 微重力對免疫系統的影響
自阿波羅號第一次航天飛行以來，目前已有數百名宇航員進行了太空飛行，其中有一半以上的宇航員發生了細菌或病毒感染。雖然在微重力條件下，病原微生物由于失去向重力性會引起形態、代謝及活性等各方面的變化以致毒力增強。但是，宇航員免疫系統功能下降也是引起感染的一個重要因素。
Tauber等分別在正常條件和微重力條件下激活Ｔ淋巴細胞，并對比不同環境激活的Ｔ淋巴細胞信號轉導之間的差異，結果顯示在進入微重力狀態20s后，跨膜銜接蛋白連接子的磷酸化減少，Ｔ淋巴細胞亞群CD3和白細胞介素2受體的表達也快速減少，表明在微重力條件下，淋巴細胞因為信號轉導的減少，導致其功能下降。
同時，T淋巴細胞不僅功能發生了變化，它的壽命也受到了影響。5-脂氧合酶在失重環境中會被激活，它在Ｔ淋巴細胞的凋亡中起重要作用。一項研究表明，微重力條件下人急性Ｔ淋巴細胞內的DNA片段和細胞色素Ｃ的水平均升高，鈣蛋白酶的活性增強，細胞凋亡的速率加快。
細胞間黏附分子 (intercellular cell adhesion mol-ecule, ICAM) 是存在于免疫細胞的跨膜蛋白。中性粒細胞募集時，其表達迅速增加，并介導中性粒細胞快速黏附于毛細血管壁上。但在微重力條件下，單核細胞與巨噬細胞中ICAM-1的表達均下調，這對細胞的遷移會產生巨大影響。在普通重力環境與微重力環境下分別培養由巨噬細胞分化而來的u937細胞，結果發現兩種不同環境中u937細胞的ICAM-1水平差異有統計學意義。
此外，與普通重力環境下培養的小鼠巨噬細胞相比，在微重力條件下培養的小鼠巨噬細胞中精氨酸酶mRNA的表達上調。精氨酸酶的上調會抑制白細胞介素12B的表達，巨噬細胞的免疫功能因此而降低。
在微重力條件下培養人臍血細胞，并對其進行分化誘導，9d后對其進行檢測發現，實驗組中CD+16b的中性粒細胞比例、活性氧類的水平及細胞的趨化運動能力均高于普通環境對照組，證實微重力可以誘導并促進造血干細胞分化為成熟的中性粒細胞。然而在微重力條件下，人免疫細胞的分布和功能的改變與其他動物免疫細胞的變化并不相同。
在微重力條件下，人外周血液中的CD+3T細胞及小鼠脾臟、大鼠外周血中的CD+3T細胞無論是比例還是數量均明顯降低，且隨著飛行時間的增加，其降低越明顯。但大鼠外周血及小鼠脾臟中Ｂ淋巴細胞、單核細胞的比例大幅度降低這一現象在宇航員體內不明顯，甚至會升高。研究者對此現象的解釋大多偏向于兩者所受的輻射、自身營養及飛行時間和心理應激等不同。
07 微重力對間充質干細胞的影響
間充質干細胞具有自我更新和多向分化的能力，這種干性特征是組織工程學和再生醫學的重要基礎。很多研究者均曾設想，微重力能否延緩間充質干細胞的分化速度，從而獲得更多的間充質干細胞。
在模擬微重力反應發生器中培養脂肪源性干細胞(adipose-derived stem cells, ADSCS) ，結果發現ADSCS 可以聚集成<200μｍ的細胞球體，且活性較好；同時，ADSCS的多能性基因 (Oct4、Sox-2和Rex-1) 的表達均上調。
在聚乳酸羥基乙酸共聚物支架上接種人牙髓干細胞，模擬微重力條件培養72ｈ后，可檢測到整合素α6、磷酸化黏著斑激酶蛋白水平上調；與普通環境相比，人牙髓干細胞的黏附能力增強，其可能是整合素α6及其下游信號分子黏著斑激酶的表達上調所致。
將人牙髓干細胞接種于聚乳酸羥基乙酸共聚物支架上，放入礦化誘導液中進行誘導，72h后，微重力環境下誘導的人牙髓干細胞中的Ｒａｓ同源基因家族成員A (Ras homolog gene family,member A, RhoA) 蛋白的表達較正常重力下誘導的人牙髓干細胞中RhoA的表達明顯降低，而RhoA蛋白水平的降低會影響細胞的礦化能力。
08 微重力對成纖維細胞的影響
成纖維細胞在細胞的變性、壞死和組織的缺損以及骨創傷的修復中扮演重要角色。在微重力條件下培養小鼠的成纖維細胞，7ｄ后提取樣本的總RNA，結果發現與普通微重力下培養的小鼠成纖維細胞相比，其成纖維細胞有238條長鏈非編碼RNA出現了差異，其中134條表達上調，104條表達下調，這些影響著巨噬細胞的分化、切口愈合的時間延長。
pao等在旋轉培養系統中模擬微重力培養角膜緣成纖維細胞，角膜緣成纖維細胞具有干性特性，它可以向脂肪細胞、骨細胞和軟骨細胞分化。在微重力作用下，細胞的增殖速度明顯降低，而具有干性特征的基因 (CD14、CD45、CD90、CD105和階段特異性胚胎抗原4）表達卻上調，證實角膜緣成纖維細胞在微重力下能表現出更強的多向分化能力。
然而，微重力下培養的人二倍體成纖維細胞的增殖卻不像其他細胞一樣會被抑制。使用3D回旋儀來模擬微重力條件培養人二倍體成纖維細胞，觀察細胞3d未發現其增殖受到影響。
09 小結
微重力通過改變細胞內基因及蛋白的表達情況來影響細胞的增殖、發育及分化。目前的研究有很多局限性，主要因為軌道環境及外太空環境難以實現及高額的實驗成本，所以絕大部分微重力環境相關的細胞生物學研究多在地面模擬微重力條件下進行，這也使得實驗結果與現實結果存在一定的偏差。面對迅猛發展的太空航天技術，解決微重力環境下人體內環境失衡、心血管系統紊亂、骨質疏松、鈣質流失、免疫系統功能下降等問題，對進一步探索外太空，及更好地利用空間資源來造福人類具有重要意義。
免責聲明：部分內容參考相關文獻和互聯網，如涉及權利所屬請聯系我們刪除。
參考文獻：
[1] 茍鴻蒙 胡瑜 楊春. 微重力對人類細胞影響的研究進展[J]. 醫學綜述， 2018, (7): 1279-1288.
[2] Otsukak, CornelissenG, KuboY, etal, Erratum: lntrinsic cardiovascular autonomic regulatory system of astronauts exposed longterm to micro-gravity in space: Observational study [J]. NPJ Micro-gravity, 2016, 2: 16037
[3] Crucian B, Sams C. lmmune system dysregulation during space flight: Clinical risk for exploration-class missions [J]. J Leukoc Biol, 2009, 86 (5): 1017-Ｊ101
[4] Matsumoto A, Storch KJ, Stolfi A, et a l. Weight loss in humans in space[J] . Aviat Space Environ Med, 2011, 82 (6):615-621.
[5] Allen DL, Bandstra ER, Harris on BC, et al. Effects of spaceflight on murine skeletal muscle gene expression[J]. JAppl Physiol (1985), 2019, 106 (2):582-595.
[6] Norsk P. Cardiovascular and fluid volume control in humans in space[J]. Curr Pharm Biotechnol, 2005, 6 (4):325-330.
[7] Buckey JC jr, Lane LD, Levine BD, et al. Orthostatic intolerance after spaceflight [J]. Appl Physiol (1985), 1996, 81 (1):7-18.
[8] 湯納平, 李華, 邱云良, 等．微重力對血管及血管內皮細胞的影響[J]. 生理科學進展，2014, 45 (5):385-390.
[9] Infanger M, Kossmehl P, Shakibaei M, et al. Induction of three-dimensional assembly and increase in apoptosis of human endo-thelial cells by simulated microgravity: Impact of vascular endo-thelial growth factor [J]. Apoptosis, 2006, 11 (5):749-764.
[10] Infanger M, Ulbrich C, Baatout S, et al. Modeled gravitational unloading induced downregulation of endothelin-1 in human endo-thelial cells [J]. J Cell Biochem, 2011, 101 (6):1439-1455.
[11] Griffoni C, Di Molfetta S, Fantozzi L, et al. Modification of pro-teins secreted by endothelia cells during modeled low gravity exposure[ j ]. J Cell Biochem, 2011, 121 (1) :265-272.
[12] Ma X, Sickmann A, Pietsch J, et al. Proteomic differences between microvascular endothelial cells and the EA. hy926 cell line form-ing three-dimensional structures[J]. Proteomics, 2014, 14 (6) :689-698.
[13] 石菲．回轉模擬失重對靜脈內皮細胞血管生成能力的影響及信號轉導機制研究［Ｄ]. 西安：第四軍醫大學，2012.
[14] Sun Z, Cao X, Hu Z, et al. MiR-103 inhibits osteoblast prolifera-tion mainly through suppressing Cavl, 2 expression in simulated microgravity[J]. Bone, 2015, 76:121-128.
[15] Sun Z, Cao X, ZhangZ, et al. Simulated microgravity inhibits L-type calcium channel currents partially by the up-regulation of miR-103 in MC3T3-E1 osteoblasts[J]. Sic Rep, 2015, 5:8077.
[16] Yan M, Wang Y, Yang M, et al. The effects and mechanisms of clinorotation on proliferation and differentiation in bone marrow mesenchymal stem cells[J]. Biochenm Biophys Res Commun, 2015, 460 (2):327-332.
[17] Hu Z, Wang Y, Sun Z, et al. miRNA-132-3p inhibits osteoblast differentiation by targeting Ep300 in simulated microgravity[J]. Sci Rep, 2015, 5:18655.
[18] Meyers VE ,Zayzafoon M, Douglas JT, et al. RhoA and cytoskele-tal disruption mediate reduced osteoblastogenesis and enhanced adipogenesis of human mesenchymal stem cells in modeled microgravity[J]. J Bone Miner Res, 2005, 20 (10):1858-1866.
[19] Bradamante S, Barenghi L, Maier JA. Stem cells toward the future: The space challenge[J]. Life (Basel), 2014, 4 (2):267-280.
[20] Dai Z, Wu F, Chen J, et al. Actin microfilament mediates osteoblast Cbfal responsiveness to BMP2 under simulated microgravity[J]. PLoS One, 2013, 8 (5):e63661.
更新時間：2025-04-27
點擊次數：190
當前位置：
